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本文是学习GB-T 34777-2017 中国仓鼠卵巢 CHO 细胞表达产品残留DNA检测 荧光定量PCR法. 而整理的学习笔记,分享出来希望更多人受益,如果存在侵权请及时联系我们

1 范围

本标准规定了检测残留宿主DNA 的荧光定量 PCR 法。

本标准适用于CHO
(中国仓鼠卵巢细胞)宿主细胞系表达的生物制品的残留宿主DNA 的检测。

2 规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文

件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法

3 术语和定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

Ct cycle threshold

每个反应管内荧光信号达到设定阈值时所经历的循环数。

4 缩略语

下列缩略语适用于本文件。

CHO: 中国仓鼠卵巢(Chinese Hamster Ovary)

5 原理

以真核细胞基因组中具有高拷贝数的16SrRNA
为目的基因,设计特异性扩增该基因的 PCR 引

物,包括正向引物:Forward Primer(5'-CCAGGCATTGGTGGCAC-3')和反向引物:
Reverse Primer

(5'-AGACAGGGTTTCTCTGT-3')。

采用SYBR 荧光定量 PCR(FQ-PCR) 法,采集荧光绘制出的PCR 扩增曲线Ct
值,与扩增体系中起 始目的基因模板的对数值呈反比,以起始模板 DNA
对数值为纵坐标,Ct 值为横坐标,制作标准曲线。

根据标准曲线方程计算样品的DNA 残留量,从而达到定量检测样品残留 DNA
的含量目的。

6 仪器设备

6.1 荧光定量 PCR 仪:含有SYBR 荧光染料检测通道。

6.2 紫外-可见分光光度计:波长范围:200 nm~760 nm。

6.3 微型离心机:转速范围:2000 r/min~23000 r/min。

GB/T 34777—2017

6.4 电热恒温水浴锅:室温至100℃;温度波动范围:士0.5℃;温度显示精度:0.1℃。

6.5 生物安全柜/超净工作台。

7 试剂或材料

除非另有说明,本方法中仅使用分析纯试剂,水为 GB/T 6682
规定的一级水。试剂盒的组成与相

关试剂的配制方式参见相应的厂家说明书。

7.1 基因组提取试剂盒。

7.2 基因组纯化试剂盒。

7.3 DNA 提取试剂盒。

7.4 引物:PCR 正向引物:Forward Primer(5'-CCAGGCATTGGTGGCAC-3'合成
PAGE 级); PCR 反向引物:Reverse Primer(5'-AGACAGGGTTTCTCTGT-3'合成
PAGE 级)。

7.5 限制性内切酶:EcoRI。

7.6 DNA 标准品。

7.7 染料法荧光定量试剂盒。

7.8 蛋白酶 K(Proteinase K)。

7.9 异丙醇(AR)。

7.10 无水乙醇(AR)。

8 试验步骤

8.1 DNA 提取

8.1.1 待测样品残留 DNA 的提取制备

用超纯水将待测样品稀释至蛋白浓度为1 mg/mL~20 mg/mL,取100μL
稀释后的样品,参照

DNA 提取试剂盒的说明书,进行残留 DNA 的提取。

8.1.2 阳性对照样品 DNA 的提取制备

用超纯水将待测样品稀释至蛋白浓度为1 mg/mL~20 mg/mL,取100 μL
稀释后的样品,加入20 μL

100 pg/mL 的 DNA 标准品,参照 DNA 提取试剂盒的说明书,进行残留 DNA
的提取。

8.1.3 阴性对照样品 DNA 的提取制备

用待测样品所对应的制剂缓冲液作为样品,参照8.1.1的方法进行相同倍数的稀释后,取100
μL 稀

释后的样品,参照DNA 提取试剂盒的说明书,进行残留DNA 的提取。

8.2 PCR 扩增检测

8.2.1 DNA 标准品工作液的制备

取 DNA 标准品,分别稀释至100 ng/mL、10 ng/mL、1ng/mL、100 pg/mL、10
pg/mL、1 pg/mL和

0.1 pg/mL等系列浓度,用于标准曲线的制备。

8.2.2 Real-time PCR 条件及体系

按表1进行反应体系的配制,各样品制备3个复孔,加样过程先将除 DNA
模板(即供测试的样品)

以外的各组分预混合,16μL/孔,最后加入标准品/待测样品/阴性对照/阳性对照
DNA 9μL/孔,加好

GB/T 34777—2017

后盖紧盖子,将PCR96
孔板或8联管于台式离心机中瞬时离心,使混合液集中于底部。放入 PCR 仪

的抽屉。

1 PCR 扩增体系

体系组分

样品量

Premix Ex(2×)

12μL

PCR正向引物:PCR Forward Primer(F',10 μmol/L)

1μL

PCR反向引物:PCR Reverse Primer(R',10 μmol/L)

1μL

超纯水(不含核糖核酸)

1.6 μL

ROX参比荧光染料:ROX Reference DyeⅡ(50×)

0.4μL

DNA模板(即供测试的样品)

9μL

对于不同试剂盒其扩增效率可能会有较大差异,在检测时应先确保系统适应性符合8.2.4.2的要求,必要时可调

整PCR扩增体系的样品量。

8.2.3 扩增条件

将制备好的PCR 反应体系放入 PCR 仪的抽屉,按表2的反应条件进行PCR 扩增。

2 PCR 扩增条件

步骤1

步骤2(40个循环)

步骤3

预变性

变性

退火

延伸

变性

溶解

变性

溶解

95 ℃ 95 ℃

52℃

72 ℃

95℃

60 ℃ 95 ℃ 60 ℃
30 s 1 min 1 min 1 min 15 s 1 min 30 s 15 s

8.2.4 系统适应性要求

8.2.4.1
有效扩增孔的取舍:根据如下检测数值的取舍标准选择有效孔:

a)
标准曲线上各数据点复孔,可根据标准曲线线性关系的好坏来判断是否舍去,可舍去明显影响
标准曲线相关性(使R²≥0.99)
的复孔数据。整条曲线上舍去的复孔数不得超过3个;

b) 阳性对照、待测样品各复孔间检测的Ct 值的SD
值大于0.5时,且由此计算的 DNA 残留值在
定量限以上,则该数据应重新检测。

8.2.4.2 系统适用性要求:

a) 扩增效率应在90%~110%;

b) 标准曲线的相关系数R²≥0.99;

c) 阳性对照样品中DNA 标准品的加样回收率应在50%~150%;

d) 阴性对照孔无非特异性扩增(DNA 含量应小于或等于1 pg/mL)。

8.3 结果计算

8.3.1 一般原则

阳性对照中 DNA 标准品的加样回收率为实际检测到在阳性对照中添加的 DNA
标准品的量,除以 在阳性对照中添加的 DNA
标准品的理论值。阳性对照中检测到的 DNA 总量减去待测样品中检测得
到的DNA 量即为实际检测到添加的 DNA 标准品的量。由于各样品中提取的 DNA
体积固定,在计算

过程中直接用浓度表示。

style="width:3.09333in" />GB/T 34777—2017

8.3.2 阳性对照样品中的 DNA 标准品加样回收率

阳性对照样品中的 DNA 标准品加样回收率按式(1)计算:

style="width:2.50003in;height:0.60016in" /> (1)

式中:

R— DNA 标准品加样回收率,%;

p₁- 阳性对照品中的 DNA 浓度测定值,单位为皮克每毫升(pg/mL);

p2— 待测样品中DNA 浓度测定值,单位为皮克每毫升(pg/mL);

p₃—— 加入的对照品 DNA 的终浓度,为20 pg/mL。

8.3.3 待测样品残留 DNA 含量

待测样品残留 DNA 含量按式(2)计算:

式中:

style="width:1.37997in;height:0.6732in" />

……………………………

(2)

x— 待测样品残留DNA 含量,单位为皮克每毫克(pg/mg);

p4- 待测样品中 DNA 浓度,单位为皮克每毫升(pg/mL);

f— 稀释倍数;

ps— 待测样品蛋白浓度,单位为毫克每毫升(mg/mL)。

延伸阅读

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